更新時間:2025-10-28
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細胞接收與處理標準操作規程 (SOP)
一、 細胞收貨通用流程
1. 檢查包裝
· 收到細胞后,立即檢查外包裝及培養瓶有無破損、漏液。
· 如有任何異常,立即拍照記錄(包裝和顯微鏡下狀態),并聯系客服。
2. 顯微鏡下初步觀察
· 用酒精棉球che底消毒培養瓶表面。
· 無需打開瓶蓋,直接在顯微鏡下觀察細胞狀態、密度并檢查是否有微生物污染(如細菌、真菌)。
· 拍照記錄不同倍數下的細胞形態和是否有污染,作為售后憑證。
3. 穩定細胞狀態
· 將整個培養瓶(瓶蓋擰緊)放入37°C、5% CO?培養箱中,靜置2-3小時,讓細胞從運輸應激中恢復。
4. 處理決策
· 靜置后,參照附帶的細胞操作指南,根據細胞密度和狀態進行shou次傳代或凍存。
· 隨貨資料:請核對并妥善保管細胞說明書、培養操作指南、細胞鑒定報告及支原體檢測報告。
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二、 常溫細胞收貨當天處理細則
第一步:收貨與檢查
· 執行第一部分(通用流程) 的第1、2步。
第二步:更換培養基與細胞收集
· 消毒瓶身后,在超凈工作臺中打開瓶蓋。
· 更換為隨貨贈送的wan全培養基。
· 特別注意:如果顯微鏡下發現有較多細胞懸浮,需將瓶內所有培養基轉移至無菌離心管,離心(如1200rpm, 5min)收集細胞,棄去舊培養基。
· 完成更換或收集后,將培養瓶放入培養箱繼續靜置2-3小時。
第三步:靜置后處理(根據細胞密度)
細胞密度情況 | 處理方案 |
密度 > 80% | 進行shou次傳代。推薦傳代比例1:2 至 1:3。不確定請聯系技術支持。 |
密度 < 80% | 繼續培養。確保瓶蓋擰松或使用透氣瓶蓋以保證氣體交換。 |
懸浮細胞 | 需離心收集全部培養基中的細胞,用新鮮wan全培養基重懸后繼續培養。 |
大量貼壁細胞漂浮 | 離心收集細胞后,可嘗試在離心管中進行消化傳代(見下方特殊處理),或立即聯系技術支持。 |
三、 細胞傳代操作步驟
A. 貼壁細胞傳代
1. 準備:吸棄舊培養基。
2. 沖洗:沿培養瓶側壁緩慢加入PBS等沖洗液,輕輕晃動后吸棄,去除殘留血清。
3. 消化:加入預熱的胰酶(如T25加1ml),輕輕晃動使胰酶覆蓋所有細胞。
4. 孵育:室溫消化約2分鐘(時間因細胞而異)。
5. 觀察:在顯微鏡下觀察,直至≥90% 細胞變圓、脫落。若未達到,可每30秒檢查一次。
6. 終止:當細胞充分解離后,立即加入兩倍胰酶體積的預熱的wan全培養基終止消化。
7. 吹打:用移液器輕輕吹打瓶壁,使細胞wan全脫落并分散成單細胞懸液。
8. 離心:將細胞懸液轉移至離心管,200 × g 離心 3-5分鐘,棄上清。
9. 重懸與接種:用少量新鮮wan全培養基重懸細胞沉淀,按適當比例稀釋后,接種到新的培養瓶中。
10. 培養:放入培養箱。若使用普通瓶蓋,務必旋松瓶蓋以利氣體交換。
B. 懸浮細胞傳代
1. 收集與離心:將細胞懸液全部轉移至離心管,1000 rpm 離心 5分鐘,棄上清。
2. 重懸:加入1-2ml新鮮wan全培養基,輕柔重懸細胞。
3. 接種:按1:2的比例將細胞懸液傳至新T25培養瓶,并補充總培養基量至5-8ml。
4. 培養:放入培養箱繼續培養。
四、 特殊問題處理:運輸中脫落的貼壁細胞
部分貼壁不牢的細胞在運輸中會脫落,屬正常現象,按以下步驟處理:
1. 收集:將瓶內所有培養基轉入無菌離心管,離心(1200rpm, 3-5min)棄上清。
2. 清洗:用PBS重懸細胞,再次離心(1200rpm, 3-5min)棄去PBS。
3. 消化:加入約1ml 0.25%胰酶,輕柔混勻(勿劇烈吹打),放入培養箱消化1-2分鐘。
4. 終止與分散:取出后輕輕吹打使細胞團分散,迅速加入3-5mlwan全培養基終止消化,離心(1200rpm, 3-5min)棄上清。
5. 重懸與接種:加入5mlwan全培養基重懸,按比例接種到新培養瓶/皿中。
6. 觀察:鏡下觀察。若細胞為單顆或僅有3-5個細胞的小團,可正常培養,待其貼壁生長。--
情況 | 處理政策 | 前提條件 |
細胞狀態差/活率低 | 可協商重發 | 收貨當天拍照記錄并聯系技術/銷售支持。 |
微生物污染 | 免費重發 | 收貨24小時內提供清晰照片(未開封瓶外觀及鏡下狀態)。 |
支原體污染 | 免費重發 | 收貨48小時內檢測為陽性。注意:將上清凍存48小時后檢測的結果無效。 |
漏液 | 可協商重發 | 收貨當天拍照記錄。保留原瓶培養基在無菌容器中培養,若3天內出現污染。 |
客戶操作失誤 | 不予免費重發 | - |
使用非推薦外源試劑 | 不予免費重發 | - |
非質量問題細胞死亡 | 可申請低價重購 | 自收貨日起一個月內。 |
實驗數據不理想 | 不予退/換 | - |
重要提示:任何異常問題,第一時間拍照并與我們聯系是獲得售后支持的關鍵。
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