HepG2細胞培養(yǎng)攻略

HepG2細胞來源于一個15歲白人的肝癌組織。該細胞分泌多種血漿蛋白：清蛋白、α2-巨球蛋白、血纖維蛋白溶酶原、鐵傳遞蛋白等。該細胞能大容量培養(yǎng)，乙肝表面抗原陰性，對G418有抗性，對人生長激素有刺激反應。

HepG2細胞廣泛應用于遺傳毒理學試驗、外源性生物性異物的細胞毒性、乙型肝炎病毒感染機制、病毒培養(yǎng)等方面的研究。由于其與肝細胞具有相同的生物學活性，還被用于胰島素抵抗的研究。

細胞名稱：人肝癌細胞細胞簡稱：HepG2種屬來源：人組織來源：肝疾病特征：肝癌細胞形態(tài)：上皮細胞樣生長特性：貼壁生長培養(yǎng)體系：MEM+10%FBS+1%Glutamax+1%NEAA+100mM Sodium Pyruvate+1%P/S傳代比例：1:2-1:4，每2-3天換液一次傳代周期：72-96 h培養(yǎng)條件：氣相：95%空氣+5%CO2，溫度：37℃凍存條件：60%基礎培養(yǎng)基+30%FBS+10%DMSO，液氮儲存?zhèn)鞔何ヅ囵B(yǎng)液。用 0.25% (w/v) Trypsin- 0.53 mM EDTA洗一次，以去除血清（血清會抑制胰酶的活性）。加2-3毫升Trypsin-EDTA，放在37℃培養(yǎng)箱內約5分鐘，直到細胞全部脫落。加6-8毫升培養(yǎng)液，用移液器把細胞吹散。加適量的細胞到新的培養(yǎng)器皿中。（以1:4至1:6為宜，傳代期間培養(yǎng)液每周更換2次）注釋：該細胞表達3-羥基-3-甲基戊二酸輔酶還原酶和肝甘油三酸脂脂肪酶。該細胞在有(英文名：gramoxone)的環(huán)境下過氧化氫酶mRNA表達增加，ApoA-I mRNA 表達減少。

HepG2細胞培養(yǎng)的*佳培養(yǎng)條件

HepG2細胞的復蘇條件

1.1 復蘇溫度的選擇

細胞復蘇：快速將所凍存細胞40℃水浴搖床60轉/ min慢搖至其溶解，溶解后馬上轉入 37 ℃水浴箱，手工慢搖恒溫 2～3min復蘇 ,復蘇后 800 轉/ min 離心 5min,吸去上清加入 10ml 含 15%胎牛血清 DMEM 培養(yǎng)基 ,混勻后加入細胞培養(yǎng)板 ,每孔 1 ml，5%CO2溫箱 37℃培養(yǎng)。與傳統(tǒng) 37 ℃水浴方法復蘇后細胞存活率為 68.4% 相比較，先40℃溶解后再37℃恒溫方法復蘇的細胞存活率為85.7%，優(yōu)于傳統(tǒng)方法。

1.2 復蘇用培養(yǎng)基的選擇使用RPMI-1640和DMEM兩種培養(yǎng)基對HepG2細胞進行培養(yǎng)，結果發(fā)現，用DMEM培養(yǎng)基培養(yǎng)的細胞結果在接種密度為1×104/c㎡、血清含量為15%時，經6h培養(yǎng)后細胞開始貼壁，12h后大部分細胞貼壁，且增值速度最快，4d后可以按1:3的比例傳代。而用RPMI-1640培養(yǎng)基培養(yǎng)的細胞在接種密度為1×104/c㎡、血清含量為20%時，經6h培養(yǎng)后細胞貼壁不明顯，但12h后部分細胞貼壁，24h后亦大部分細胞貼壁，且增值速度相對較慢，5天后可以按1:3的比例進行傳代。以上結果說明，使用DMEM培養(yǎng)基既可以節(jié)省血清，細胞貼壁所用時間短、增殖速度快，并且傳代細胞培養(yǎng)也使用DMEM培養(yǎng)基，使用DMEM培養(yǎng)基進行復蘇，避免了配制不同培養(yǎng)基所帶來的麻煩，因此在HepG2細胞復蘇中推薦使用DMEM培養(yǎng)基。
1.3 復蘇時的接種密度研究發(fā)現當接種密度為1×104/cm2，血清含量為20%時, 細胞24h后大部分貼壁, 且增殖速度最快, 5d后可按1:3比例傳代；當接種密度大于1×104/c㎡和（或）血清含量少于20%時, 細胞表現為貼壁困難, 出現進行性退化; 當接種密度小于1×104/c㎡ 血清含量為20%時, 細胞24h后大部分貼壁, 但增殖速度明顯減慢, 約7d后才可按1:3比例傳代。

消化酶及消化時間的選擇

如果用EDTA+胰酶的消化能力太強，消化時間不好把握，傳代消化后細胞死亡較多；單用EDTA消化能力太弱，消化時間太長且不易將細胞消化*；用PBS將細胞洗3次，再加入 0.25%胰酶，覆蓋細胞約30s后吸去胰酶，37℃放置 2～3 min，顯微鏡下可觀察到細胞消化適度。將待傳代細胞不用PBS洗滌和用pH7.2的PBS洗滌一遍、二遍、三遍后分別用0.25%的胰蛋白酶溶液、0.05%胰蛋白酶-0.53mmol/L EDTA.Na溶液進行消化（消化液用量為蓋滿瓶底），觀察時間為30秒、1、2、3、4、5、6、7、8、9、10分鐘。

結果發(fā)現：不用PBS洗滌的細胞分別用上述兩種酶消化，10分鐘后細胞仍然消化不*。用pH7.2的PBS洗滌一遍、二遍、三遍后的細胞，再用0.25%的胰蛋白酶溶液消化時，分別經3分鐘、1分鐘和0.5分鐘能*消化好細胞。而用0.05%胰蛋白酶-0.53mmol/L EDTA.Na溶液進行消化時，*消化好細胞約需3分鐘、1.5分鐘、1分鐘。二者的結果相符。

根據上述結果可知，在進行HepG2細胞的消化時，先用pH7.2的PBS洗滌三遍后，再用0.25%的胰蛋白酶溶液消化0.5分鐘效果比較好。

另一種推薦使用的消化方法如下：用1×PBS將細胞洗滌2次 再加入適量的0.15%胰蛋白酶（含有0.02%EDTA并以7：3的體積比混合）覆蓋細胞約20秒后吸去胰蛋白酶 （含有0.02%EDTA并以7：3的體積比混合）。